Токсикологическая химия 25
| Цена, руб. | 500 |
| Номер работы | 13540 |
| Предмет | Химия |
| Тип работы | Контрольная |
| Объем, стр. | 25 |
| Оглавление | КОНТРОЛЬНАЯ РАБОТА №2 СИТУАЦИОННАЯ ЗАДАЧА № 2.1 На СХЭ доставлены внутренние органы трупа (желудок с содержимым, сердце, печень, почки, мозг, жировая ткань, легкое), кровь, моча. Объекты не подвержены гнилостному разложению. Обстоятельства дела. Сход ледника в одном из горных районов Северного Кавказа преградил путь группе спортсменов-альпинистов, возвращавшихся на базу после тяжелой тренировки. Группа состояла из 5 человек, один из которых был врач и впервые участвовал в восхождении. До базы оставалось пройти несколько километров. Запасы пищи закончились утром. Надвигалась ночь. « Новичок» предложил найти пищу в осеннем лесу и приготовить «овощное рагу с пряностями». Опытные альпинисты предупредили, что сбор съедобных растений возможен только завтра утром. Известно, что в среде альпинистов строго соблюдается «сухой» закон. Через некоторое время все заметили, что «новичок» очень подвижен, громко смеётся, бессвязно что-то говорит. Руководитель группы, решив, что врач выпил спирт, находившийся в походной аптечке, приказал уложить его в спальный мешок, крепко стянув ремнями, и написал в своем журнале рапорт об отчислении этого спортсмена из группы. Наутро врач был мертв. Глаза его были открыты, зрачки значительно расширены. Группа была найдена и спасена через день после трагедии. Информация При осмотре походной аптечки: упаковка на склянке с этанолом не нарушена. При судебно-фармакогностическом исследовании остатков частей растений, найденных в содержимом желудка, было установлено, что растения относятся к семейству Solanaceae. Токсикант, обнаруженный при СХА, содержится в этих растениях, представляет собой сложный эфир и является оптически не активным веществом. Содержание токсиканта во внутренних органах трупа соответствует летальной дозе вещества. При СХА были обнаружены следы вещества, ингибирующего холинэстеразу. В кармане погибшего была найдена упаковка препарата, обладающего широким диапазоном действия на насекомых. Известно, что основные метаболиты этого вещества – продукты его окисления и гидролиза: α-нафтол, формальдегид, аммиак, углекислый газ. Цель исследования: провести СХЭ на наличие 2-х токсикантов. Приведите схему химико-токсикологического анализа представленных биообъектов. КОНТРОЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ ВАРИАНТ №1 1. Метод изолирования лекарственных веществ подкисленной водой (метод Швайковой-Васильевой). 2. Химико-токсикологический анализ на производные барбитуровой кислоты. 3. ТСХ-скрининг на вещества основного характера. 4. Хромато-масс-спектроскопия в анализе наркотиков. Пробоподготовка. Нетрадиционные биообъекты. Особенности и достоинства метода. 5. Хлорорганические пестициды: классификация, особенности ХТА, конкретные примеры. УПРАЖНЕНИЕ к контрольной работе № 2 по токсикологической химии. Представьте алгоритмы проведения ХТА (согласно принципам GLP) и интерпретацию полученных результатов: Девочка 2-х лет страдает бронхитом с астматическим компонентом. Для лечения применяли порошок Звягинцева (эфедрин, димедрол). После приема порошка у ребенка наблюдалось психомоторное возбуждение, галлюцинации. Литература: 1. Руководство по судебной медицине. Под редакцией В.В. Томилина, Г.А. Пашиняна. М.: Медицина, 2001. с. 6-11; с.246-264 2. ***Альберт А. Избирательная токсичность. М.: Медицина,1989, Т.1, с.237-292. 3. **Швайкова М.Д. Учебник по токсикологической химии. М.: Медицина, 1975. с.5-25,с.27-62.; с.63 – 64; с.120-133. с. 354-371 5. **ЛужниковЕ.А., КостомароваЛ.Г. Острые отравления Руководство М.: Медицина, 2000. с.21-52; с.52-63; с.63-71; с.72-75. с.75-80; с.119-124 с.354-360 6. ***Сергеев П.В., Шимановский Н.Л., Петров В.И.Рецепторы физиологически активных веществ. Москва-Волгоград: Семь ветров, 1999, 640 с. 7. Нормативные документы. Управление качеством клинических лабораторных исследований. М.: Лабпресс, 2000. с.6-57. 8. Нормативные документы Метрология. Термины и определения. РОСТ 116263 •79. 9. Клиническая лабораторная аналитика. Под ред В.В. Меньшикова. Основы клинического лабораторного анализа. М.: Агат-Мед, 2002. Т.1. с. 15-41 ТЕСТОВЫЙ КОНТРОЛЬ 2.01. К экстрагентам, применяемым на II этапе изолирования, предъявляются следующие требования: 1) высокая селективность 2) удельный вес больше удельного веса воды 3) низкая температура кипения 4) способность диффундировать в клетки ткани 5) отсутствие необратимых реакций между растворителем и растворенным веществом 2.02. При выборе условий экстракции (I этап, направленный анализ) следует учитывать: 1) рКа токсического вещества 2) липофильность токсического вещества 3) растворимость в водной и органических фазах 4) спектральные характеристики токсического вещества 5) степень связывания токсического вещества с белками 2.03. В качестве основных предварительных методов обнаружения токсических веществ, выделенных из тканей и органов, используют: 1) ИК спектроскопию 2) иммунохимические 3) хромогенные реакции 4) УФ спектроскопию 5) хроматографические (ТСХ) 2.04. В качестве подтверждающих методов при обнаружении токсических веществ используют: 1) ГЖХ 2) ВЭЖХ 3) ГХ/МС 4) иммунохимические 5) УФ спектроскопию 2.05. К экстрагентам, применяемым на 1 этапе изолирования токсических веществ (твердо-жидкостная экстракция), предъявляют следующие требования: 1) низкая температура кипения 2) способность диффундировать в клетки ткани 3) селективность 4) несмешиваемость с водой 5) высокая растворяющая способность 2.06. На эффективность экстрагирования из внутренних органов трупа оказывают влияние следующие качественные факторы: 1) соотношение количества экстрагента и массы навески 2) рН среды 3) природа биообъекта 4) природа анализируемого вещества 5) время экстракции 2.07. На эффективность экстрагирования из внутренних органов трупа оказывают влияние следующие количественные факторы: 1) природа анализируемого вещества 2) рН среды 3) навеска органа 4) природа соединения, добавленного для создания рН среды 5) время экстракции 2.08. Из кислой среды экстрагируются органическим растворителем 1) морфин, аминазин 2) хинин, дионин 3) фенобарбитал, амидопирин, кофеин 4) нитразепам, диазепам 5) новокаин, скополамин 2.09. Какие способы очистки могут быть использованы после изолирования лекарственных веществ из трупного материала 1) осаждение белков спиртом 2) возгонка 3) тонкослойная хроматография 4) центрифугирование 5) реэкстракция 2.10. Какие способы очистки используют при изолировании лекарственных веществ на 1 этапе 1) тонкослойная хроматография 2) осаждение белков спиртом 3) осаждение белков электролитами 4) гель-хроматография 5) центрифугирование 2.11. При отравлении лекарственные вещества всасываются из желудочно-кишечного тракта в виде: 1) продуктов биотрансформации 2) диссоциированных молекул 3) комплексов с белками 4) недиссоциированных молекул 5) конъюгатов 2.12. Лекарственные вещества, поступившие в кровь из ЖКТ, связываются с: 1) мочевиной 2) углеводами 3) микроэлементами 4) белками 5) витаминами 2.13. Выберите факторы, влияющие на метаболизм и токсикокинетику лекарственных веществ: 1) индукция и ингибирование метаболизма 2) топологические состояния 3) генетический 4) возрастные особенности 5) длительность применения лекарственных средств 20 2.14. Выбор “мочи” в качестве объекта ХТА на эфедрин и его метаболиты обусловлен: 1) отсутствием данных о смертельных отравлениях эфедрином 2) выведением до 70% поступающего эфедрина почками 3) тем, что моча является одним из наиболее доступных объектов при определении наркотического опьянения у живых лиц 4) ем, что “моча” входит в круг обязательных объектов при ХТА секционного материала 5) моча является наиболее «информативным» объектом при определении наркотического опьянения у живых лиц. 2.15. Преимущества метода сорбции перед жидкость-жидкостной экстракцией следующие: 1) специфика интерпретации получаемых данных 2) извлечения менее загрязнены и более концентрированы 3) высокая эффективность 4) высокая экспрессность и простота анализа 5) высокая воспроизводимость получаемых результатов количественного определения 2.16. К реакциям 1-ой фазы метаболизма относятся: 1) конъюгирование 2) смешанные реакции 3) немикросомальное окисление 4) окисление, катализируемое микросомальными ферментами печени 5) ацилирование 2.17. Какой метод обнаружения барбитуратов дает наименьший процент ложноположительных результатов 1) РИА 2) ИФА 3) ультрафиолетовая спектрофотометрия 4) ТСХ 5) ГЖХ 2.18. Выведение метаболитов каннабиноидов происходит главным образом с: 1) секретом молочных желез 2) мочой 3) калом 4) через кожу 5) секретом слюнных желез 2.19. Обнаружение каннабиноидов на хроматограмме происходит путем опрыскивания хроматограммы: 1) р-ром прочного синего Б в 10% р-ре HCI 2) р-ром AgNO3 3) водным раствором KMnO4 4) р-ром прочного синего Б в 10% р-ре Na2CO3 5) р-ром FeCI3 2.20.. Производные 1,4-бензодиазепина являются: 1) амфолитами 2) слабыми кислотами 3) сильными кислотами 21 4) слабыми основаниями 5) сильными основаниями 2.21. Какие реакции обнаружения характерны для производных фенотиазинов: 1) концентрированная хлорная кислота 2) концентрированная серная кислота 3) концентрированная азотная кислота 4) концентрированная хлористоводородная кислота 5) концентрированная хлорная кислота с нитритом натрия 2.22. При исследовании на лекарственные соединения в качестве предварительного теста используются: 1) спектрофотометрия 2) реакции осаждения 3) ТСХ-скрининг 4) ВЭЖХ (высокоэффективная жидкостная хроматография 5) реакции окрашивания 2.23. При проведении ТСХ-скрининга на вещества основного характера на хроматограмме обнаружены окрашенные пятна при обработке пластинки реактивом Марки. На какие вещества Вы проведете основное исследование: 1) нитразепам 2) морфин 3) кодеин 4) скополамин 5) аминазин 2.24. В процессе хроматографического скрининга веществ кислотного и слабоосновного характера химик-эксперт не обнаружил на пластинке окрашенных пятен с дифенилкарбазоном и солями ртути, а также с реактивом Драгендорфа. Какие группы лекарственных соединений он смог исключить из дальнейших исследований: 1) производные пурина 2) производные барбитуровой кислоты 3) производные пиразолона 4) производные салициловой кислоты 5) производные индола 2.25. Кислотный гидролиз мочи при анализе биожидкостей на наркотические вещества необходим для того, чтобы: 1) перевести наркотические вещества в основания, хорошо растворимые в органическом растворе 2) разрушить связь наркотического вещества с белком 3) разрушить коньюгаты с глюкуроновой, уксусной кислотами 4) перед экстракцией органическим растворителем создать определенное рН среды 5) не потерять наркотические вещества при дальнейшем анализе 2.26. Укажите соответствие способов и реакций обнаружения морфина в крови наркомана: 1) хроматография в тонком слое сорбента 2) окраска с реактивами Марки и Фреде 3) окраска с хлоридом железа (III) 4) свечение в УФ-области 22 5) окраска с реактивом Фреде. 2.27. При проведении ТСХ-скрининга на вещества основного характера не обнаружено окрашенных пятен 1) с хлоридом железа (III) и 2) с серной кислотой. Какие группы лекарственных веществ можно исключить из дальнейших исследований: 1) производные тропана 2) производные пиразолона 3) производные фенотиазина 4) производные п-аминобензойной кислоты 5) опиаты 2.28. Какие алкалоиды должен обнаружить в извлечениях из биологических жидкостей (крови, мочи) химик-эксперт, чтобы можно было обосновать опийную наркоманию: 1) героин 2) папаверин 3) кодеин 4) морфин 5) этилморфин 2.29. Какие методы количественного определения используются в химико-токсикологическом анализе при определении барбитуратов: 1) фотоколориметрия по реакции образования азокрасителя 2) гравиметрия по весу остатка после испарения хлороформного извлечения 3) фотоколориметрия по реакции с солями кобальта в среде изопропиламина 4) спектрофотометрия дифференциальная 5) неводное титрование 2.30. Укажите методы, которые используются на конечном этапе химико-токсикологического анализа объекта для количественного определения алкалоидов и наркотических веществ: 1) полярография 2) УФ-спектрофотометрия 3) иммуноферментные методы 4) гравиметрия 5) фотометрия 2.31. Результаты при определении количества барбитуратов с использованием прямой УФ-спектрофотометрии обычно завышены из-за: 1) веществ экзогенного характера 2) неправильного выбора кювет или светофильтров 3) малого интервала концентраций, подчиняющегося закону Бугера-Ламберта-Бера 4) сопутствующих веществ эндогенного характера 5) большой дозы, принятой внутрь при отравлении 2.32. Способы подтверждающего исследования на барбитураты: 1) цветные реакции 2) фармакологические пробы 3) электронные спектры поглощения 4) микрокристаллоскопия 5) иммуноферментный тест 23 2.33. Очистку от сопутствующих веществ при исследовании на лекарственные соединения проводят: 1) осаждением белков вольфраматом 2) гель-хроматографией 3) тонкослойной хроматографией 4) сорбцией 5) реэкстракцией 2.34. Наличие фенобарбитала можно подтвердить: 1) реакцией с хлоридом железа 2) образованием нитрозосоединения 3) железоиодидным реактивом 4) выделением кислотной формы 5) реактивом Несслера 2.35. Основной объект исследования на эфедрон: 1) промывные воды желудка 2) рвотные массы 3) внутренние органы трупа 4) моча 5) выдыхаемый воздух 2.36. Реактивы, используемые для обнаружения эфедрина: 1) реактив Несслера 2) соль Рейнеке 3) реактив Драгендорфа 4) нингидрин в ацетоне 5) хлорид железа 2.37. Способы выделения алкалоидов: 1) дистилляция с водяным паром 2) экстракция ацетоном 3) экстракция этанолом 4) настаивание с подщелоченной водой 5) настаивание с водой, подкисленной серной кислотой 2.38. Способ выделения опиатов из тканей органов: 1) экстракция хлороформом из щелочной среды 2) настаивание с подщелоченной водой 3) экстракция ацетоном 4) настаивание с подкисленной водой 5) экстракция хлороформом из кислой среды 2.39. Проявление опиатов на хроматограмме: 1) хлорной кислотой с нитритом натрия 2) дифенилкарбазоном 3) реактивом Марки 4) реактивом Драгендорфа 5) хлоридом ртути 2.40. Реактив для отличия морфина от кодеина: 1) тропеолин ОО 2) Драгендорфа 3) Несслера 4) хлорид железа 5) Браттона-Маршала 2.41. Методы количественного определения производных фенотиазина: 1) ИК-спектроскопия 2) титриметрия 3) УФ спектрофотометрия 4) фотоколориметрия 5) визуальная колориметрия 2.42. Способ проявления нативных 1,4-БДА на хроматограмме: 1) -нафтолом 2) по собственной желтой окраске 3) ФПН-реактивом 4) реактивом Драгендорфа 5) N--нафтилэтилендиамином 2.43. Объекты для исследования на группу производных бензодиазепина 1) желудок с содержимым 2) печень 3) почки 4) выдыхаемый воздух 5) промывные воды желудка 2.44. Способ выделения производных бензодиазепина 1) прямая экстракция в органический растворитель 2) настаивание с подкисленной водой 3) настаивание с подкисленным спиртом 4) настаивание с подщелоченной водой 5) деструкция 2.45. Проявление хроматограммы на бензодиазепины проводят 1) по собственной желтой окраске 2) реактивом Братона-Маршала 3) по флюоресценции после хлорной кислоты 4) хлоридом железа 5) реактивом Драгендорфа 2.46. Какие вещества относятся к производным амфетамина: 1) МДА (3,4 метилендиоксиамфетамин) 2) эфедрон 3) метамфетамин (первитин) 4) метаквалон 5) МДМА (3,4 метилендиоксиметамфетамин), (Экстази) 2.47. Реакции обнаружения гептахлора: 1) Шенемана 2) Витали-Морена 3) с диэтиламином 4) с анилином и пиридином 5) Браттона-Маршала 2.48. Реактив для проявления пластинки “Silufol” при обнаружении хлорофоса: 1) бромтимоловый синий 2) аммиакат серебра 3) сульфаниловая кислота 4) резорцин с карбонатом натрия 5) Драгендорфа 2.49. Ядохимикаты, определение которых проводят по реакции образования молибденовой сини 1) гептахлор 2) ГХЦГ 3) карбофос 4) метафос 5) севин 2.50. Найдите ошибку: Необходимые компоненты для проведения холинэстеразной пробы 1) ацетилхолинэстераза 2) ацетилхолин 3) бромтимоловый синий 4) уксусная кислота 5) агар 2.51. Ингибиторами холинэстеразы “in vivo” и “in vitro” являются: 1) Гептахлор 2) Карбофос 3) Метафос 4) ДДТ 5) Севин 2.52. Возможные способы изолирования дихлофоса (ДДВФ) из органов трупа: 1) Экстракция органическими растворителями 2) Перегонка с водяным паром 3) Изолирование подкисленным спиртом 4) Минерализация 5) Изолирование подкисленной водой 2.53. Скрининговые тесты для анализа пестицидов группы ФОС: 1) Определение активности холинэстеразы в крови или тканях органов трупа 2) Биохимическая реакция ингибирования холинэстеразы экстрактами из биологического материала 3) Анализ методом ТСХ 4) Анализ методом ВЭЖХ 5) Анализ методом ГЖХ 2.54. Пестициды, количественное определение которых производят после минерализации по образованию молибденовой сини: 1) Гексахлоран 2) Гептахлор 3) Метафос 4) Карбофос 5) Севин 2.55. Требуют специальной пробоподготовки (очистки экстрактов от соэкстрактивных веществ) при анализе органов трупа на наличие ФОС методы: 1) ТСХ 2) ВЭЖХ 3) ГЖХ 4) Хроматомасс-спектрометрический 5) Спектрофотометрический 2.56. Какие общие физико-химические методы и химические реакции используют для предварительного анализа извлечений из биологических объектов на хлорорганические пестициды: 1) обнаружение продуктов минерализации с молибдатом аммония 2) обнаружение продуктов минерализации с магнезиальной смесью 3) тонкослойная хроматография (ТСХ) реагент для обнаружения - аммиачный раствор нитрата серебра в ацетоне и УФ-лучи 4) отщепление всех атомов хлора, образующийся хлор вытесняет иод из раствора иодида кадмия и окрашивает крахмал в синий цвет 5) тонкослойная хроматография, реагент для обнаружения - сульфаниловая кислота и УФ-лучи 2.57. Какие физико-химические методы и химические реакции используют для предварительного анализа извлечений на фосфорорганические пестициды: 1) обнаружение продуктов минерализации с молибдатом аммония и магнезиальной смесью 2) тонкослойная хроматография, реагент для обнаружения - о-толидин и пероксид водорода 3) сплавление с металлическим натрием и обнаружение сульфидов 4) холинэстеразная проба 5) обнаружение продуктов гидролиза с хлоридом железа (III) 2.58. Подозревается отравление гексахлорциклогексаном. Какие физико-химические методы и химические реакции используют для доказательства гексахлорциклогексана: 1) ГЖХ 2) взаимодействие с металлическим натрием в присутствии спирта и обнаружение образовавшихся продуктов- с нитратом серебра и по реакции Витали-Морена 3) тонкослойная хроматография: проявитель – аммиачный раствор нитрата серебра и УФ-лучи 4) минерализация серной и азотной кислотами и обнаружение образовавшихся продуктов 5) кипячение в спиртовом растворе гидроксида натрия и обнаружение продуктов реакции с нитратом серебра 2.59. Какими методами проводят количественное определение фосфорорганических пестицидов: 1) аргентометрия после отщепления органически связанного хлора 2) кокплексонометрия 3) газожидкостная хроматография 4) фотометрия по образованию молибденовой сини после гидролиза пестицида 5) тонкослойная хроматография 2.60. Какими методами проводят количественное определение хлорорганических пестицидов: 1) хроматоферментативный метод 2) аргентометрия после отщепления органически связанного хлора 3) фотометрия по продуктам нитрования бензола после отщепления всех атомов хлора 4) комплексонометрия 5) газожидкостная хроматография |
| Цена, руб. | 500 |
Заказать работу «Токсикологическая химия 25»
Отзывы
-
25.04
Спасибо за помощь! Только статистику пришлось немного переделать. Вместе с научным руководителем, о
Марина -
17.04
Рецензия на отлично, спасибо!!!
Марина - 15.04 Михаил